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          火雞腸炎科研性PCR檢測試劑盒多少錢

          產品簡介

          火雞腸炎科研性PCR檢測試劑盒多少錢是即用型PCR試劑盒的改良產品, 含有Taq DNA 聚合酶、dNTPs、MgCl2、反應緩沖液、PCR 增強劑、上樣染料等所有PCR 所需要的成分,用戶只需加入模板和引物即可進行PCR 反應,具有廣泛的用途。

          產品廠地:上海市
          更新時間:2025-03-04
          廠商性質:經銷商
          訪問量:505
          詳細介紹在線留言
          品牌其他品牌貨號GOY-P2926
          規格50T供貨周期現貨
          主要用途僅用于科研應用領域化工

          火雞腸炎科研性PCR檢測試劑盒多少錢使用及效果:
          將壓碎的一小片重量約在100 mg 左右的植物種子(約1/4 黃豆大小)或直徑約為0.5-0.7 cm(或面積相當的其他形狀)的植物葉片直接加到新鮮配制的0.1 mL溶液A 中,95℃保溫10-15 分鐘,加入0.1 mL 溶液B,混勻,直接取上清液(相當于PCR 體積的1/10)作為模板進行PCR。剩余樣品可以放4℃保存。

          產品名稱

          規格

          分類

          火雞腸炎科研性PCR檢測試劑盒多少錢

          50T

          PCR檢測試劑盒

          樣本采集、存放及運輸:
          1、樣本采集:各類型樣本按照常規方法采集;
          2、存放:樣本在2~8℃條件下保存應不超過72h,-70℃以下可長期保存,但應避免反復凍融(zui多凍融3次);
          3、運輸:采用泡沫箱加冰密封進行運輸。
          普通PCR反應流程:
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          自備物品:
          火雞腸炎科研性PCR檢測試劑盒多少錢15毫升錐形離心管:用于制備樣品的容器
          比色皿:用于比色的容器
          96孔酶標板:用于比色的容器
          分光光度儀:用于比色分析
          酶標儀:用于微量樣品比色分析
          儲存條件:
          14℃或-20℃
          準備物品
          清理液(A)                                   毫升
          染色液(t B)                                   微升
          稀釋液(C)                                   毫升
          溶解液(tD)                                   毫升
          產品說明書                                   1份

          NFAT1/NFATc2  核因子活化T細胞胞漿蛋白2抗體 0.1ml

          Phospho-Jak3 (Tyr980/981)  磷酸化蛋白酪氨酸激酶JAK-3抗體 0.1ml

          Plzf  早幼粒細胞白血病鋅指蛋白抗體 0.2ml

          Hyaluronidase2  透明質酸酶2/玻璃酸酶2抗體 0.2ml

          C21orf55/DnaJC28  21號染色體開放閱讀框55抗體 0.2ml

          PHKG1  磷酸化酶激酶γ1 0.2ml

          SKAR  DNA聚合酶δ相互作用蛋白3抗體 0.2ml

          CCL11/Eotaxin 1  嗜酸粒細胞趨化蛋白抗體 0.2ml

          火雞腸炎科研性PCR檢測試劑盒多少錢HBXIP  乙型肝炎病毒X蛋白相互作用蛋白 0.2ml

          Phospho-Insulin Receptor Beta(Tyr1345)  磷酸化胰島素受體β抗體 0.1ml

          Donkey Anti-Goat IgG/Cy5  Cy5標記的驢抗羊IgG 0.1ml

          Rabbit Anti-Avidin/Gold  膠體金標記的兔抗親和素 2ml

          反應五要素:
          參加PCR反應的物質主要有五種即引物、酶、dNTP、模板和Mg2+
          引物:引物是PCR特異性反應的關鍵,PCR 產物的特異性取決于引物與模板DNA互補的程度。理論上,只要知道任何一段模板DNA序列, 就能按其設計互補的寡核苷酸鏈做引物,利用PCR就可將模板DNA在體外大量擴增。設計引物應遵循以下原則:
          ①引物長度: 15-30bp,常用為20bp左右。
          ②引物擴增跨度: 以200-500bp為宜,特定條件下可擴增長至10kb的片段。
          ③引物堿基:G+C含量以40-60%為宜,G+C太少擴增效果不佳,G+C過多易出現非特異條帶。ATGC隨機分布,避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列。
          ④避免引物內部出現二級結構,避免兩條引物間互補,特別是3'端的互補,否則會形成引物二聚體,產生非特異的擴增條帶。
          ⑤引物3'端的堿基,特別是末及倒數第二個堿基,應嚴格要求配對,以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。
          ⑥引物中有或能加上合適的酶切位點, 被擴增的靶序列有適宜的酶切位點, 這對酶切分析或分子克隆很有好處。
          ⑦引物的特異性:引物應與核酸序列數據庫的其它序列無明顯同源性。
          引物量:每條引物的濃度0.1~1umol或10~100pmol,以低引物量產生所需要的結果為好,引物濃度偏高會引起錯配和非特異性擴增,且可增加引物之間形成二聚體的機會。

           

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